diff --git a/bachelorarbeit.kilepr b/bachelorarbeit.kilepr index 38132cc..1ba641f 100644 --- a/bachelorarbeit.kilepr +++ b/bachelorarbeit.kilepr @@ -164,10 +164,10 @@ order=-1 [item:inc/abkuerzungen.tex] archive=true -column=34 +column=66 encoding=UTF-8 highlight=LaTeX -line=36 +line=11 mode=LaTeX open=true order=1 @@ -214,10 +214,10 @@ order=6 [item:inc/material.tex] archive=true -column=21 +column=89 encoding=UTF-8 highlight=LaTeX -line=459 +line=16 mode=LaTeX open=true order=2 @@ -241,8 +241,8 @@ CursorColumn=18 CursorLine=64 [view-settings,view=0,item:inc/abkuerzungen.tex] -CursorColumn=34 -CursorLine=36 +CursorColumn=66 +CursorLine=11 [view-settings,view=0,item:inc/einleitung.tex] CursorColumn=75 @@ -253,8 +253,8 @@ CursorColumn=0 CursorLine=1 [view-settings,view=0,item:inc/material.tex] -CursorColumn=21 -CursorLine=459 +CursorColumn=89 +CursorLine=16 [view-settings,view=0,item:inc/zusammenfassung.tex] CursorColumn=25 diff --git a/bachelorarbeit.pdf b/bachelorarbeit.pdf index 28598bd..0c9e112 100644 Binary files a/bachelorarbeit.pdf and b/bachelorarbeit.pdf differ diff --git a/inc/abkuerzungen.tex b/inc/abkuerzungen.tex index be9daaf..9f04196 100644 --- a/inc/abkuerzungen.tex +++ b/inc/abkuerzungen.tex @@ -8,7 +8,7 @@ \acro{A. thaliana}[\textit{A. thaliana}]{\textit{Arabidopsis thaliana}} \acro{BisTris}{Bis(2-hydroxyethyl)amino-tris(hydroxymethyl)methan} \acro{BSA}{Bovines Serumalbumin} - \acro{CD}{Circularer Dichronismus} + \acro{CD}{Circulardichronismus} \acro{cmc}{\textit{critical micelle concentration}, kritische Mizellenkonzentration} \acro{CTR1}{\textit{CONSTITUTIVE TRIPLE RESPONSE 1}} \acro{CV}{\textit{column volume}, Säulenvolumen} diff --git a/inc/material.tex b/inc/material.tex index 8394ae8..2148398 100644 --- a/inc/material.tex +++ b/inc/material.tex @@ -14,6 +14,7 @@ Analysen-/Präzisionswaagen & Sartorius, Göttingen\\ Autoklav & H+P Labortechnik, Oberschleißheim\\ Automatische Pipetten & Gilson, Bad Camberg\\ + \ac{CD}-Spektrometer J-715 & JASCO Corp., Gross-Umstadt\\ DNA-Gelkammersystem PerfectBlue & PEQLAB Biotechnologie, Erlangen\\ Elektroblotter PerfectBlue 'Semi-Dry' & PEQLAB Biotechnologie, Erlangen\\ Fluoreszenzspektrometer LS 55 & PerkinElmer, Rodgau\\ @@ -478,9 +479,19 @@ Wie beim photometrischen Bindungsnachweis erfolgte die Bestimmung der tatsächli 60 & 9,5 &\\ \bottomrule \end{tabularx} -\label{tab:haemin_konzentration_photometrie} +\label{tab:haemin_konzentration_fluoreszenz} \end{table} \clearpage -\subsubsection{\ac{CD}} +\subsubsection{\acs{CD}-Spektroskopie} \label{sec:nachweis_haemin_bindung_cd} +Bei der \ac{CD}-Spektroskopie wird die Wechselwirkung von optisch aktiven Substanzen mit zirkular polarisiertem Licht zu analytischen Zwecken ausgenutzt. Eine links- und eine rechtszirkulare Lichwelle überlagern sich hierbei zu linear polarisiertem Licht. Optisch aktive Substanzen weisen für die links- bzw. rechtszirkulare Komponente unterschiedliche Absorptionskoeffizienten \textepsilon$_\text{L}$ und \textepsilon$_\text{R}$, wobei letztlich ihre Differenz $\Delta\varepsilon$ gemessen und als Elliptizität $\theta$ engegeben. $d$ sei die Schichtdicke und $c$ die Konzentration $c$ angegeben \citep{lottspeich_bioanalytik_2006}: + + \begin{equation} + \theta (\lambda) = \Delta\varepsilon \cdot c \cdot d + \end{equation} + +Die \ac{CD}-Spektroskopie kann für die Analyse von Proteinsekundärstrukturen eingesetzt werden. Hierbei werden Spektren im Bereich von \SIrange{160}{250}{\nano\meter} aufgenommen. Man macht sich dabei zu Nutze, dass in diesem Bereich die $n \rightarrow \pi^*$ bzw. $\pi \rightarrow \pi^*$-Übergänge der Peptidbindung liegen. Durch ihre Chiralität reagiert das \ac{CD}-Spektrum eines Peptids sehr empfindlich auf Änderungen der Sekundärstruktur \citep{lottspeich_bioanalytik_2006}. + +Die Messungen erfolgten in CD-Puffer bei einer Proteinkonzentration von \SI{0,5}{\milli\gram\per\milli\liter}. +